Description (mâle). – Taille entre 19 et 25 mm. Corps massif, peu allongé (fig. 569). Dessus brun foncé noirâtre à revêtement squamuleux ; élytres quelquefois rougeâtres.

 Clypéus large, peu allongé, à côtés bien arrondis ; bord antérieur légèrement bilobé (fig. 570). Sillon clypéo-frontal fin. Tête à ponctuation forte, enfoncée et serrée. Pilosité squamuleuse assez dense, plus ou moins dressée. Labre important, bien bilobé (fig. 572). Mandibules étroites, ne dépassant pas des côtés du labre. Dernier article des palpes maxillaires fusiforme et fin (fig. 575). Antennes de 10 articles ; article III pas plus long que le IV. Massue antennaire courte de 3 articles (fig. 571).

 Pronotum transverse, à côtés crénelés et incurvés en partie antérieure, ciliés ; angles antérieurs légèrement saillants ; bord antérieur non marginé, cilié ; disque à ponctuation forte, serrée et pilosité squamuleuse dense (fig. 577). Ecusson un peu plus large que long, ponctué ou non.

 Elytres à côtés sans gouttière, élargis avant l’apex ; suture peu rebordée ; des côtes légèrement saillantes ; calus apicaux non marqués ; apex élytral peu rentré ; ponctuation forte, riduleuse ; pilosité squamuleuse plus fine et plus espacée que celle du pronotum.

 Propygidium avec un sillon longitudinal médian (fig. 580). Pygidium un peu plus large que long, à apex arrondi, non bombé ; à pilosité fine et dense. Métépisterne large, villeux. Métasternum fortement villeux (fig. 581). Pas d’apophyse mésosternale (fig. 578). Ventrites bien bombés, à dense squamulation fine.

 Protibia tridenté, les trois dents fortes (fig. 573). Eperon interne au niveau de la dent médiane. Protarse allongé. Griffes courbées avec un fort denticule interne médian (fig. 579). Mésotarse allongé, plus long que le mésotibia. Métafémur allongé, pileux. Métatibia allongé, à apex élargi, avec une carène médiane entière (fig. 576). Eperons apicaux inégaux, l’interne plus allongé (fig. 582). Métatarse court à article I pas plus long que le II.

 Paramères peu différents d’une espèce à l’autre, courts, évasés en entonnoir.

 Femelle : Peu différente du mâle si ce n’est par son aspect plus massif et par les caractères suivants : massue antennaire un peu plus courte (fig. 571) ; protibia plus massif à dent apicale plus longue et courbée (fig. 574) ; protarse plus court ; clypéus un peu plus important ; côtés élytraux plus élargis avant l’apex ; métatibia à apex plus élargi ; éperons apicaux avec l’interne dilaté (fig. 582) ; mésotarse plus court.

7 espèces

 Asthenopholis Brenske, 1898b : 388 (Leucopholidarum, espèce type non désignée).

 Asthenopholis Brensk. ; Péringuey, 1904 : 285.

 Asthenopholis Brenske, 1898 ; Dalla Torre, 1912 : 182.

 Asthenopholis Brenske ; Kolbe, 1914 : 352.

 Asthenopholis ; Arrow, 1917 : 60.

 Asthenopholis Brenske ; Arrow, 1943 : 784.

 Asthenopholis Brenske, 1898 ; Lacroix, 2008e : 236, 239 (clé).

 Asthenopholis Brenske, 1898 ; Harrison, 2009 : 4.

  Espèce type : Asthenopholis transvaalensis Brenske, 1898 (désignée par Harrison, 2009).

Clé des espèces du genre (modifiée d’après Harrison)

1.- Ecusson non ou très peu pileux (fig. 590) ; bord antérieur du pronotum sans frange de longues soies (fig. 592) ; métatibia mâle fortement dilaté à l’apex (fig. 597) ; taille moyenne à grande (18-27 mm)   2

— Ecusson bien pileux (fig. 591) ; bord antérieur du pronotum avec une frange de longues soies (fig. 593) ; métatibia mâle peu dilaté à l’apex (fig. 596) ; taille faible à moyenne (14-21 mm)   5

2.- Distribution en Afrique australe (Afrique du sud, Mozambique) ; paramères bien évasés sur le dessus   3

— Distribution en Afrique orientale (Kenya, Tanzanie, Ouganda) ; paramères plus étroits   4

3.- Distribution le long de la côte du nord KwaZulu-Natal, peut-être aussi au Mozambique ; pilosité du corps d’un brun clair ; pronotum moins transverse, ratio : 1.6 ; paramères (fig. 587)   rex Harrison

— Distribution le long de la côte du centre et sud KwaZulu-Natal ; pilosité du corps blanchâtre ; pronotum plus transverse, ratio : 1.67 ; paramères (fig. 583)   adspersa (Boheman)

4.- Pronotum à pilosité écailleuse ovale, jaunâtre, dense ; labre peu bilobé et peu vertical ; taille : ♂ 22-25 mm, ♀ 24-27 mm ; écaillure du pygidium courte et élargie ; corps plus élargi ; paramères (fig. 584)   crassa Arrow

— Pronotum à pilosité fine, blanchâtre, moins dense ; labre bien bilobé et bien vertical ; taille : ♂ 18-21 mm, ♀ 19-21 mm ; écaillure du pygidium allongée et plus fine ; corps plus étroit ; paramères (fig. 589)   ugandensis Moser

5.- Tégument brun ; pilosité du dessus jaunâtre ; écaillure élytrale longue ; pilosité de l’écusson longue ; paramères (fig. 588)   subfasciata (Blanchard)

— Tégument noirâtre ou brun foncé ; pilosité du dessus blanchâtre ; écaillure élytrale courte ; pilosité de l’écusson courte ; taille : 14-19 mm   6

6.- Pilosité de l’écusson moins courte,  5 fois au moins le diamètre du point ; ratio du pronotum : 1.55 ; paramères (fig. 586)   minor Brenske

— Pilosité de l’écusson très courte, 1,5-2 fois le diamètre du point ; ratio du pronotum 1.47 ; paramères (fig. 585)   crypsis Harrison

adspersa, mâle

crassa, mâle

crassa, femelle

ugandensis, mâle

ugandensis, femelle

Asthenopholis adspersa (Boheman, 1857)

Types. – adspersa : Lectotype femelle au NHRS, Stockholm (21,5 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : Caffra-ria (i) // J. Wahlb. (i) // Type (i) // 5844, E91 (i) // Naturhistoriska Riksmuseet Stockholm Loan no 460/02 (i) // 02594 // Lectotype ♀, Asthenopholis adspersa (Boheman, 1857), des. J. du G. Harrison 2009 (i).

 transvaalensis : Lectotype mâle au MNHU, Berlin (25 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : Transvaal, D. Heyne (m) // Asthenopholis transvaalensis, Type ♀ Brsk. (m) // Coll. Brenske // Type (rouge) (i) // Zool. Mus. Berlin (i) // Lectotype ♂, Asthenopholis transvaalensis Brenske, 1898, des. J. du G. Harrison 2009 (rouge) (i) // = Asthenopholis adspersa (Boheman, 1857), det. J. du G. Harrison 2009 (i).

 La détermination du sexe par Brenske est incorrecte. En réalité un mâle. La localisation « Transvaal » est erronée.

 Distribution. – AFRIQUE DU SUD : Côtes du KwaZulu-Natal. Dukuduku (28°22’S 32°14’E) ; Dukuduku Forest (28°23’S 32°19’E) ; Durban (29°51’S 31°03’E) ; Emapangeni (28°45’S 31°54’E) ; Enseleni (28°33’S 31°38’E) ; Gingindlovu (29°01’S 31°35’E) ; Hluhluwe (28°02’S 32°17’E) ; Inyalazi (28°13’S 32°18’E) ; lake Nhlabane (28°36’S 32°17’E) ; Mapelane (28°25’S 32°25’E) ; Mtubatuba (28°25’S 32°11’E) ; Mtunzini (28°57’S 31°45’E) ; Richards Bay (28°49’S 32°02’E) ; Nyalazi Forest (28°12’S 32°22’E) ; St Lucia Lake (28°00’S 32°30’E) ; Twin Streams (Farm) (28°59’S 31°42’E). 86 exemplaires au MNHN, BMNH, SANC, DMSA, TRM, ISNB ; 59 mâles et 27 femelles).

Asthenopholis crassa Arrow, 1902
Type au BMNH, Londres. Holotype femelle (28 mm) avec les étiquettes suivantes : Type (ronde) (i) // Nengia, B. E. // 1900.194 (m) // Asthenopholis crassus Arrow, Type (m) (écriture de Arrow) // JduGH110 // Holotype ♀, Asthenopholis crassa Arrow, 1902, det J. du G. Harrison 2009.

 Distribution. – KENYA : Nengia (Ngenia School) (01°07’S 36°38’E, 1900, 1 femelle holotype, BMNH ; 1 mâle, MNHN) ; Matiri (Mitunguruu), Meru distr. (00°45’N 34°28’E, X-1982, XI-1983, XI-1988, 4 femelles, R. Mourglia rec., MRAC) ;  Mtito Andei (02°40’S 38°10’E, XII-1991, 2 ex., K. Werner rec., TRM) ; Tana river (01°30’S 39°30’E, V-1915, 1 femelle, Guy Babault rec., MNHN) ; Thika river (01°10’S 36°45’E, IV-1915, 1 femelle, Guy Babault rec., MNHN).

 TANZANIE : Près de Namanga ( ?) (2-XII-1999, 4 ex., Werner & Lizler rec., coll. M. Lacroix) ; Près de Babati (04°25’S 35°45’E, 3/6-XII-1997, 1 ex., Werner & Lizler rec., coll. M. Lacroix) ; Tarangire N.P. (04°00’S 36°00’E, 12-III-1999, 1 ex., lumière, M. Lacroix rec., coll. M. Lacroix) ; Mkomazi game reserve, Ibaya camp (03°58’S 37°48’E, 24-XI-1995, 1 mâle et 1 femelle, S. van Noort, SAMC ; 11-XI-1994, 8 ex., K. Werner, TRM) ; Monts Pare (04°00’S 37°45’E, I-1990, 1000m, 1 femelle, K. Werner rec., MRAC).

Asthenopholis crypsis Harrison, 2009
Type au Transvaal Museum, Pretoria. Holotype mâle (16 mm) avec les étiquettes suivantes : KZN, Impendle, 17 Nov. 2001, R. Perissinotto & L. Clennell // JduGH72 // Holotype ♂, Asthenopholis crypsis sp. nov. Harrison, J. du G. 2009.

 Cinq Paratypes mâles au Transvaal Museum ; 1 paratype mâle au BMNH ; 1 paratype mâle au LACM.

 Distribution. – AFRIQUE DU SUD : KwaZulu-Natal : Impendle Nature reserve (29°36’S 29°52’E, 17-XI-2001, 1 mâle, R. Perissinotto & L. Clennell rec., TRM) ; Boston (29°40’S 29°58’E, 2-XII-1903, 5 mâles, Cl. Fuller rec., coll. Maritzburg, TRM ; 1 mâle, BMNH ; 1 mâle, LACM).

Asthenopholis minor Brenske, 1898
Type au MNHU, Berlin. Lectotype mâle (16 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : Transvaal // Asthenopholis minor type ♂ Brsk. (m) // Coll. Brenske // Type (rouge) (i) // Zool. Mus. Berlin // 02602 // Lectotype ♂ Asthenopholis minor Brenske, 1898. des. J. du G. Harrison, 2009.

 Un Paralectotype mâle au MNHU, Berlin : Transvaal, D. Heyne (m) // Asthenopholis minor cotype. Brsk (m) // Coll. Brenske // Co-type (rouge) (i) // Zool. Mus. Berlin // Paralectotype ♂ Asthenopholis minor Brenske, 1898. des. J. du G. Harrison, 2009 // JduGH128.

 Distribution. – AFRIQUE DU SUD : Espèce centralisée au et autour du KwaZulu-Natal, Vlottenburg, Eastern Cape, Free State, Limpopo, Mpumalanga, Lesotho, Swaziland.

KwaZulu-Natal : Benett Farm (28°51’S 31°24’E) ; Botha’s Hill (29°43’S 30°44’E) ; Cathedral Peak (28°55’S 29°09’E) ; Durban (29°51’S 31°01’E) ; Emapangeni (28°45’S 31°54’E) ; Emoyeni (28°51’S 31°14’E) ; Eshowe (28°53’S 31°28’E) ; Frere (28°53’S 29°46’E) ; Greyton (29°04’S 30°35’E) ; Inchanga (29°45’S 30°40’E) ; Malvern (29°53’S 30°56’E) ; Mtunzini (28°57’S 31°45’E) ; Nqutu (28°12’S 30°40’E) ; St. Lucia Lake (28°00’S 32°30’E) ; Scottburgh (30°17’S 30°44’E) ; Ulundi (28°23’S 31°23’E) ; Umzimkulu (30°23’S 29°53’E) ; Vryheid (27°45’S 30°47’E).

Limpopo : Nylstroom (24°42’S 28°24’E)  ; Pietersburg University (23°54’S 29°27’E).

Mpumalanga : Carolina (26°04’S 30°07’E) ; Kastrol Nek (25°17’S 30°17’E) ; Kopees Kraal, Lydenburg (25°07’S 30°12’E) ; Lydenburg (25°06’S 30°27’E) ; Wakkerstroom (27°21’S 30°08’E) ; White River (25°19’S 31°01’E).

Zwaziland : Ezulwini (26°24’S 31°10’E) ; Mhlume (26°02’S 31°51’E) ; Nokwane (26°08’S 31°55’E) ; Tabankulu (Ntabankulu Mountain) (26°29’S 31°39’E) ; Tshaneni (25°59’S 31°43’E).

Lesotho : Qachas Nek, Lesotho (30°00’S 28°45’E).

Free State : Oliviershoek Pass (28°34’S 29°04’E) ; Qua-Qua nat. Park (28°31’S 28°42’E).

305 exemplaires au DMSA, TRM, MRAC, BMNH, SMTD, MNHU, MNHN, SANC, LACM.

Asthenopholis rex Harrison, 2009
Type au SANC, Pretoria. Holotype mâle (24 mm) avec les étiquettes suivantes : South Africa, NTL, Sodwana Bay Nat. Park, 27.32S 32.41E, 07-14.xi.1987, L.S. Evans (i) // Asthenopholis sp. Det. A.V. Evans, 88 // National Coll. of Insects, Pretoria, S. Afr // Holotype ♂, Asthenopholis rex sp. nov. Harrison J. du G. 2009.

 Deux paratypes femelles au SANC.

 Distribution. – AFRIQUE DU SUD : Côtes du KwaZulu-Natal : Sodwana Bay National Park (27°32’S 32°41’E, 14-XI-1987, 1 mâle et 1 femelle, Evans rec., SANC) ; St Lucia Estuary (28°17’S 32°25’E, 13-II-1989, R. Oberprieler, 1 femelle, SANC).

 3 exemplaires : 1 mâle et 2 femelles. Endémique des zones dunaires côtières.

Asthenopholis subfasciata (Blanchard, 1851)
Types. – subfasciata : MNHN, Paris. Lectotype mâle (20 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : Museum paris, Cap de Bonne Espérance, Verreaux 1835 (i) // 179/55 (ronde) (m) // Ancylonycha subfasciata Type Blanch. (m) // Cotype (i) // Lectotype ♂, Asthenopholis subfasciata (Blanchard, 1851), des. J. du G. Harrison 2009 // JH 2009.

 Deux Paralectotypes mâles au MNHN, Paris : Verreaux 836-36 ; Hottentot Delalande.

dasypus : MLUH, Halle. Lectotype femelle (18 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : South Africa // dasypus Nob. Pr. B. sp. Thor. (m) // MLU Halle, WB Zoologie, S.-Nr. 813113, T.-Nr. // 02592 // Lectotype ♀, Asthenopholis dasypus (Burmeister, 1855), des. J. du G. Harrison 2009.

 Distribution. – AFRIQUE DU SUD : Western et Eastern Cape province.

 Eastern Cape : Brakloof Farm (33°14’S 26°23’E) ; Grahamstown (33°18’S 26°32’E) ; Howieson’s Poort (33°21’S 26°30’E) ; Humansdorp (34°02’S 24°46’E) ; Kleinemonde (33°31’S 26°55’E) ; Mbotje Forest (31°27’S 29°43’E) ; Port Saint John’s (31°38’S 29°32’E) ; Queenstown (31°54’S 26°53’E) ; Silversdale Farm (33°03’S 27°39’E) ; Thomas Baines Nature Reserve (33°23’S 26°30’E) ; Tsitsikama Park (33°58’S 23°49’E) ; Waterloo (29°10’S 26°03’E).

 Western Cape : George (33°58’S 22°27’E) ; Goukama, Knysna (34°02’S 22°57’E) ; Keurbooms River (34°01’S 23°25’E) ; Keurboomstrand (34°00’S 23°27’E) ; Knysna (34°02’S 23°02’E) ; Plettenberg Bay (34°03’S 23°22’E) ; Robberg Peninsula (34°06’S 23°24’E) ; Uitzicht Annex (34°00’S 23°19’E) ; Wilderness (33°58’S 22°34’E).

 310 exemplaires (242 mâles et 68 femelles) au MNHU Berlin, BMNH Londres, MNHN Paris, TRM Pretoria, ISNB Bruxelles, MRAC Tervuren, SANC Pretoria, DEI Eberswalde, AMGS Grahamstowm, USNM Washington, MMKZ Kimberley, SAM Cape Town, NHRS Stockholm.

Asthenopholis ugandensis Moser, 1913
Type au MNHU, Berlin. Lectotype mâle (19 mm) désigné par Harrison (2009) avec les étiquettes suivantes : Entebbe, Uganda, Centr. Afr. // Asthenopholis ugandensis Mos., Type ♂ // Type (rouge) (i) // Zool. Mus. Berlin (i) // 02602 // Lectotype ♂, Asthenopholis ugandensis Moser, 1913, des. J. du G. Harrison 2009.

 Cinq Paralectotypes au MNHU, Berlin (3 mâles et 2 femelles).

 Distribution – OUGANDA : Entebbe (00°03’N 32°28’E, 4 mâles et 2 femelles, série type, MNHU).

 KENYA : Mpekatoni (Witu) (02°20’S 40°30’E, 6-V-2000, 8 ex., Werner & Lizler rec., coll. M. Lacroix).

 TANZANIE : Lac Manyara (03°35’S 35°50’E, XI-1961, 1 mâle, Frey rec., J. Decelle det. 1969, MRAC).

 Discussion. – Le genre Asthenopholis se distingue des autres genres de Leucopholini afrotropicaux par la combinaison des caractères suivants : corps massif, peu allongé ; avant-corps à squamulation dense ; bord antérieur du clypéus non bilobé ; antennes de 10 articles ; labre allongé, bien bilobé ; dernier article des palpes maxillaires fin, fusiforme ; bord antérieur du pronotum non marginé ; dessus élytral avec des côtes saillantes ; ventrites bien bombés ; propygidium avec un sillon longitudinal médian ; pas d’apophyse mésosternale ; pygidium plus large que long ; protibia tridenté ; métatibia avec une carène oblique médiane ; éperons apicaux inégaux.

 Toutes les espèces du genre Asthenopholis possèdent un sillon longitudinal médian (propygidial groove chez les Anglo-Saxons) qui a pour fonction de bloquer les élytres sur les sternites et de protéger les ailes. Aucun autre genre de Leucopholini africains ne possède cette configuration. On retrouve par contre ce sillon chez les genres Wernerophylla Lacroix (Pachydeminae, Afrique), Leptolepis Ley (Leucopholini, Madagascar), Tricholepis Blanchard (Leucopholini, Madgascar), Stenopegylis Arrow (Pegylini, Afrique), Psilonychus Burmeister (Schizonychini, Afrique), Epipholis Moser et Brachypholis Brenske (Diplotaxini, Afrique).

 Biologie. –  Les espèces peuvent être diurnes (minor, crypsis) ou nocturnes (adspersa, subfasciata). Le pic d’activité se trouve en été (Octobre à Décembre) : adspersa (Octobre à Février), rex (Novembre à Février), crassa (Octobre à Janvier puis Avril-Mai), ugandensis (Novembre-Décembre puis Avril-Mai), minor (Octobre à Janvier puis Avril), crypsis (Décembre), subfasciata (Novembre à Mars). Les deux espèces est-africaines (crassa, ugandensis) présentent deux périodes d’apparition en relation avec les deux saisons des pluies en Tanzanie et au Kenya.

 Certaines espèces sud-africaines peuvent devenir des « pestes » pour l’agriculture. C’est le cas de subfasciata qui peut attaquer les plantations d’ananas dans la province de l’Eastern Cape. Les larves peuvent occasionner de sérieux dommages en attaquant les racines de ces plantes. A. minor a été signalé pour avoir attaqué des plantations de canne à sucre dans des fermes du Zwaziland ainsi que dans la région d’Emoyeni au KwaZulu-Natal.

 Oberholzer (1959) a décrit la larve, au troisième stade, de A. subfasciata. Smith & al. (1995) ont redécrit cette larve. Aucune autre larve d’Asthenopholis n’a été jusqu’à présent décrite. Les larves d’Asthenopholis ont une préférence pour des sols légers, sablonneux. La localisation de adspersa et rex, aux zones dunaires côtières, en est un bon exemple.

 Historique. – Le genre Asthenopholis a été créé par Brenske, en 1898, pour les taxons nouveaux A. minor et A. transvaalensis, tous deux d’Afrique du Sud. Aucune espèce type n’a été désignée lors de la description du genre.

 En 1851, Blanchard décrit la nouvelle espèce Ancylonycha subfasciata (n° 1058, Cap de B.-Esp., long. 20 mm. Des voyages de Delalande, de MM. Verreaux, etc.).

En 1855, dans son « Handbuch der Entomologie », Burmeister décrit la nouvelle espèce Ancylonycha dasypus d’Afrique du Sud. Il met en synonymie en tant que variété le taxon Anc. subfasciata Reiche, Blanch.

En 1857, dans « Insecta Caffrariae », Boheman décrit Ancylonycha (Dej.) adspersa (Long. 21,5). Habitat in regione fluvii Limpoponis.

En 1869, dans leur « Catalogus Coleopterorum », Gemminger & Harold citent dans le genre Hoplochelus Blanchard les taxons adspersus Bohem. (Limpopo) et subfasciatus Blanch. (Cap bon. spei ; = dasypus Burm., Port Natal).

En 1898, dans « Melolonthiden aus Afrika », Bresnke décrit Asthenopholis n. g. Leucopholidarum, proche du genre Brachylepis avec les nouveaux taxons transvaalensis (Long. 25 mm, femelle, Transvaal, collection Brenske) et minor (Long. 16 mm, Transvaal, collection Brenske).

En 1902, dans « On Rutelid and Melolonthid Beetles from Mashonaland and East Africa », Arrow décrit le nouveau taxon Asthenopholis crassus sp. n. (Long. 28 mm, Brit. East Africa : Nengia). Il indique que le taxon subfasciatus Blanchard décrit comme un Ancylonycha par Blanchard, et classé ensuite parmi le genre Hoplochelus, appartient en réalité au genre Asthenopholis. Il en est de même pour le taxon adspersa Bohem.  Le taxon transvaalensis Brenske pourrait être synonyme du taxon adspersa Boheman. Il indique, également, que Mr. Marshall lui a envoyé des spécimens de Asthenopholis minor Brenske en provenance de Malvern, Natal. Brenske lui a indiqué qu’il possédait un exemplaire du Bechuanaland et pouvant représenter une nouvelle espèce.  

 En 1904, dans son « Catalogue of the Coleoptera of South Africa », Péringuey redécrit le genre Asthenopholis Brensk., 1898. Deux espèces sont présentes en Afrique du sud : A. sub-fasciata Blanch., 1850 (= dasypus Burm., = adspersus Bohem., = minor Brsk. ; 16-21 mm ; Cape Colony, Transvaal, Natal, Bechuanaland) ; A. crassus Arrow, 1902 (24-25 mm ; Natal, aussi décrite de British East Africa). Il indique que le taxon subfasciata est très variable et qu’il a été décrit plusieurs fois sous différents noms (dasypus Burmeister, minor Brenske, transvaalensis Brenske, adspersus Boheman, bechuana Brenske in litteris).

 En 1912, dans son catalogue, Dalla Torre cite le genre Asthenopholis Brenske, 1898, avec les taxons crassa Arrow, 1902 (Britisch-Ostafrika), minor Brenske, 1898 (Transvaal, Natal), subfasciata Blanch., 1850 (Holochelus, Cap, Port Natal, = adspera Boh., 1857, = dasypus Burm., 1855), transvaalensis Brenske, 1898 (Transvaal).

 En 1913, Moser décrit Asthenopholis ugandensis n. sp. (20-22 mm, Uganda, Entebbe). Il indique que cette espèce est proche par son aspect de Brachylepis elephas Gerst., et aussi de A. crassa Arrow pour les espèces du genre.

 En 1914, dans la partie « Scarabaeiden » de « Wissenschaftliche Ergebnisse der Deutschen Zentral-Afrika-Expedition 1907-1908 », Kolbe cite Asthenopholis ugandensis Moser d’Uganda (Entebbe, nach Moser).

 En 1917, dans un article intitulé « Some Systematic Notes on Melolonthine Coleoptera », Arrow souligne que Péringuey a confondu le taxon crassus Arrow avec adspersus Boheman et le taxon subfasciatus Blanchard avec minor Brenske. Il présente une clé des quatre bonnes espèces : subfasciatus Bl. (Cape Colony), minor Brenske (Natal), adspersus Boh. (= transvaalensis Brenske, Natal, Transvaal), crassus Arrow (British East Africa).

 En 2009, Harrison révise le genre Asthenopholis Brenske, 1898. Sept espèces sont incluses dans le genre : A. adspersa (Boheman, 1857), A. crypsis sp. nov., A. crassa Arrow, 1902, A. minor Brenske, 1898, A. subfasciata (Blanchard, 1851), A. ugandensis Moser, 1913 et A. rex sp. nov. Asthenopholis transvaalensis Brenske, 1898 est ici désignée comme espèce type du genre. La synonymie entre A. transvaalensis Brenske, 1898 et A. adspersa (Boheman, 1857) est confirmée. Des lectotypes sont désignés pour A. adspersa (Boheman, 1857), A. dasypus (Burmeister, 1855), A. minor Brenske, 1898, A. subfasciata (Blanchard, 1851), A. transvaalensis Brenske, 1898, et A. ugandensis Moser, 1913. En l’absence de description, Asthenopholis bechuana Péringuey, 1904, est considéré comme nomen nudum. Des photos d’habitus, des photos de détail, des photos des édéages sont incluses pour les espèces valides. Une clé permet de déterminer les sept espèces et des cartes illustrent leur distribution. Quatorze planches comprenant 138 photos au scanner électronique sont incluses afin de mieux souligner des caractères peu discernables. Cette étude est basée sur l’examen de 750 spécimens (520 mâles, 138 femelles) provenant de 22 collections et représentant 115 localités.

Distribution. – Le genre Asthenopholis Brenske présente une répartition discontinue en l’état actuel des connaissances. Il est présent à la fois en Afrique australe (5 espèces : Afrique du sud, Lesotho, Swaziland) et aussi en Afrique orientale (2 espèces : Tanzanie, Kenya, Ouganda). Sa présence au Mozambique n’est actuellement pas confirmée.